
Taq DNA-Polymerase
Unsere Taq DNA-Polymerase (isoliert aus dem thermophilen Bakterium Thermus aquaticus) wurde rekombinant in E. coli exprimiert und zeichnet sich durch eine hohe Thermostabilität aus. Sie ist ohne Aktivitätsverlust bei RT bis zu 1 Monat stabil. Bzw. für bis zu 6 Monate bei 2 - 8 °C. Mit unserer Taq Polymerase erzielen Sie hervorragende Ergebnisse in Ihren PCR-Anwendungen, da Sie jede Ihrer PCR-Reaktionen individuell optimieren können.
Eigenschaften
- Thermostabile Taq DNA-Polymerase (stabil für 4 Wochen bei RT)
- Zwei verschiedene Puffersysteme (mit und ohne Detergenz)
- Separate MgCl2-Lösung (25 mM)
- S-Solution (für GC-reiche templates und Hintergrundminimierung)
Wählen Sie das optimale Puffersystem für Ihre Anwendung:
- Puffer B: Enthält Tween-20 und hilft Ihnen die Ausbeuten Ihrer PCR-Reaktion zu optimieren
- Puffer BD: Ohne Tween-20, ideal für detergenz-sensitive Downstream-Anwendungen
Gut zu wissen
Die Taq-DNA-Polymerase oder kurz Taq-Polymerase wurde ursprünglich aus dem thermophilen Bakterium Thermus aquaticus isoliert. Die Bio&SELL Taq-Polymerase wird rekombinant in E.coli exprimiert. Der entscheidende Vorteil dieser Taq-Polymerase ist ihre Stabilität bei hohen Temperaturen, die im Denaturierungsschritt bis zu 35 mal je nach Zykluszahl des jeweiligen PCR-Programms erreicht werden müssen. Die Bio&SELL Taq Polymerase ist eine hochprozessive 5' -> 3'-DNA-Polymerase mit 5' -> 3'-Exonukleaseaktivität. Eine 3' -> 5'-Exonukleaseaktivität fehlt vollständig. Wie jede DNA-Polymerase ist die Enzymaktivität von einer ausreichend hohen Mg2+-Ionen-Konzentration abhänging. Die Konzentration kann variiert werden und so die optimale Leistungfähigkeit der Taq-Polymerase erreicht werden. Zusätzlich fügt das Enzym einzelne Nukleotide (fast ausschließlich Adenosin) an die 3'-Enden der DNAs an, so dass eine TA-Klonierung ohne weitere Modifizierungen möglich ist.
Lager- und Verdünnungspuffer
50% Glyzerol (v/v), 20 mM Tris ·HCI (ph 8,7 bei 25 °C), 100 mM kCI, 0,1 mM EDTA und Stabilisatoren.
Unitdefinition
Ein Unit ist die Enzymmenge, die benötigt wird, um 10 nmol dNTP in 30 Min. bei 74 °C in eine säureunlösliche Form umzuwandeln.
PCR-Troubleshooting?
Ganz einfach mit der S-Solution von Bio&SELL. Die PCR-Ergebnisse ausgehend von Templates mit hohem GC-Gehalt können durch Zugabe der S-Solution erheblich verbessert werden. Auch bei unerwünschten Nebenprodukten in der PCR-Reaktion kann die S-Solution zur Hintergrund-minimierung beitragen.
Die bei der Bio&SELL Taq DNA-Polymerase separat gelieferte MgCl2-Lösung erlaubt die Variation der Mg2+-Ionen-Konzentration in Ihrem PCR-Ansatz und liefert dadurch weiteren Optimierungsspielraum für die jeweiligen, spezifischen PCR-Reaktionen. In der Lehre können Sie hier Ihren Studenten die Mg2+-Abhängigkeit der Enzymaktivität der DNA-Polymerase eindrucksvoll demonstrieren.
PCR-Optimierung
Im ersten Schritt einer PCR-Reaktion muß die DNA, die als Vorlage dient (engl: template), denaturiert werden. Das heißt doppelsträngige DNA wird in die Einzelstränge zerlegt und etwaige gebildete Sekundärstrukturen werden aufgeschmolzen. Im zweiten Schritt muß die sequenzspezifische Anlagerung der Primer (in der Anwendung meist als Oligos, von Oligonukleotiden, bezeichnet) an die template DNA erfolgen (engl. annealing). Dazu muss die exakte, Primer-spezifische Annealing-Temperatur in der Probe erreicht werden. Maßgeblich für den Erfolg einer PCR-Reaktion ist die Wahl der korrekten Annealing-Temperatur. Ist die Temperatur zu hoch gewählt, ist die Ausbeute an Produkt nicht optimal. Bei einer zu niedrig gewählten Annealing-Temperatur können unspezifische Anlagerung der Primer zu unerwünschten Nebenprodukten führen. Die optimale Annealing-Temperatur ist abhängig von der Schmelztemperatur der Primer. Bereits beim Primerdesign der forward- und reverse-Primer sollten die Schmelztemperaturen berücksichtigt werden, da diese aufeinander abgestimmt sein müssen. Ein weiterer kritischer Punkt ist die Bildung von Sekundärstrukturen innerhalb der einzelnen Primer-Moleküle oder Primer-Dimeren-Bildung.
Essentiell ist die Qualität des verwendeten Thermocyclers, in dem die PCR-Reaktion durchgeführt wird. Neben schnellen Heiz-und Kühlraten und einer absolut präzisen Regeltechnik ist eine benutzerfreundliche Bedienoberfläche essentiell. Mit dem Labcycler gradient von Bio&SELL kann effizient und schnell in nur einer Versuchsreihe die optimale Annealing-Temperatur bestimmt werden. Durch Programmierung eines Temperatur-Gradienten in beliebiger Abstufung im Annealing-Schritt können mehrere Annealing-Temperaturen gleichzeitig verglichen werden.
Anwendungs- und Qualitätskontrolle
- Primer-Extensionsreaktionen: das Enzym ist frei von Nicking- und Primeraktivitäten sowie von Exonukleasen und unspezifischen Endonukleasen.
- SDS/PAGE: 95 kD-Bande, Reinheit >k98 %.
- Aktivität und Stabilität wurden mittels PCR getestet.
- Die Fehlerrate pro Nukeotid pro Zyklus ist 8.3x10-5, die Genauigkeit 1.2x104.
- Die Halbwertzeit beträgt bei 95°C 90 Min.
Produktinformationen
Kategorie: | Enzyme |
Produkttyp: | Polymerase |
Konzentration: | 5 U/µl |
Verpackungsgröße: | 100 µl |
Versandtemperatur: | RT |
Lagertemperatur: | -20 °C |
Anwendung
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Polymerase-Kettenreaktion (PCR)
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Quantitative PCR (qPCR)
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Genotypisierung & Mutationsanalyse
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Nachweis mikrobieller Kontamination
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Klonierung
Publikationen
Biotechnological Production, Isolation and Characterisation of (2R,3S)-2,3-Dihydroxy-2,3-Dihydrobenzoate
Martina Kiel, Israel Barrantes, Dietmar H. Pieper, Karl-Heinrich Engesser
Microbial Biotechnology (2025); 18:e70228
HROB Is Implicated in DNA Replication
Julia Kutz, Hannes Schmietendorf, Sheikh Anika Rahman, Franz Opel, Helmut Pospiech
Genes (2024), 15, 1587
Synaptotagmin 1-triggered lipid signaling couples exo- and endocytosis
Svenja Bolz
Dissertation an der Freien Universität Berlin (2023)
Loop-Mediated Isothermal Amplification for Laboratory Confirmation of Buruli Ulcer Disease - Towards a Point-of-Care Test
Marcus Beissner, Richard Odame Phillips, Florian Battke, Malkin Bauer, Kossi Badziklou, Fred Stephen Sarfo, Issaka Maman, Agata Rhomberg,
Ebekalisai Piten, Michael Frimpong, Kristina Lydia Huber, Dominik Symank, Moritz Jansson, Franz Xaver Wiedemann, Abiba Banla Kere, Karl-Heinz Herbinger, Thomas Löscher, Gisela Bretzel
PLoS Negl Trop Dis 9(11): e0004219
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