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rna saeulchen isolierung

RNA Mini Kit

Unser RNA Mini Kit wurde speziell für die Isolierung von Total-RNA aus Gewebeproben, Zellen, Bakterien und Biopsien entwickelt. Unser säulenbasierter Kit beinhält einen Lysepuffer, der für den effizienten Aufschluß unterschiedlicher Ausgangsmaterialien optimiert ist und gleichzeitig RNasen inhibiert. Durch integriertes Wegfiltern der DNA gelingt eine Isolierung der Total-RNA, ohne DNA-Verdau, in nur 15-30 min. Unser RNA Mini Kit besitzt eine hervorragende RNA-Bindungskapazität von ca. 100 µg und erlaubt eine schnelle sowie effektive Isolierung von Total-RNA in höchster Qualität (Ratio A260 / A280: 1.7 - 2.0).

Eigenschaften

Schnelle Isolation - In nur 15 - 30 min 
Einfache Handhabung - Säulenbasierte RNA-Isolierung 
Hohe Ausbeute - Bindungskapazität ca. 100 µg RNA (abhängig von Menge/Qualität des Probenmaterials)
Guter Durchsatz - Geeignet für bis zu 5 x 106 Zellen oder für Gewebeproben bis zu 20 mg
Hohe Reinheit - Ratio A260/A280: 1.7 - 2.0
Hohe Sicherheit - Ohne Verwendung giftiger Substanzen wie Phenol, DTT, beta-Mercaptoethanol

Artikelliste

ProdukteArtikelnummerMengeShop
RNA Mini Kit
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10 Reaktionen
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250 Reaktionen

Gut zu wissen

Ursprüngliche RNA-Aufreinigungsverfahren basierten auf einer Zwei-Phasen-Extraktion gefolgt von einer Alkoholausfällung der RNA (z.B. Phenol-Chloroform-Isoamylalkohol-Extraktion). Diese Verfahren sind zeitaufwändig und, durch den Einsatz giftiger Substanzen wie z.B. Phenol, gefährlich. Zudem werden kurze RNA-Moleküle nur mit geringem Ertrag gewonnen. Unser RNA Mini Kit basiert auf einer Adsorption der RNA an Silikatsäulchen und bietet Ihnen eine schnelle, einfache und ungefährliche Alternative.

Um ihre RNA-Isolation noch effizienter zu machen haben wir folgende Tipps:

1. Inaktivierung von RNasen
Die größte Herausforderung bei der RNA-Isolierung stellen RNasen dar. RNasen verdauen RNA unspezifisch und kommen in Zellen und Geweben allgegenwärtig vor. Sorgen Sie deshalb für ein RNase-freies Laborumfeld und inaktivieren Sie die RNasen direkt bei der Probenvorbereitung (durch Verwendung von z.B. RNaseStop, Artikel-Nr.: BS.RS.1000). Oft wird dem Lysepuffer Mercaptoethanol oder Dithiothreitol hinzugefügt, um RNasen durch die Spaltung ihrer Disulfidbrücken zu inaktivieren. Beide Substanzen sind jedoch gesundheitlich bedenklich. Hier bietet unser RNA Mini Kit eine ungefährliche Alternative. Der Lysepuffer unseres RNA Mini Kits ist nicht nur optimiert für den effektiven Zellaufschluss, sondern auch für die Inhibierung von RNasen, ohne Einsatz giftiger Substanzen.

2. Menge des Probenmaterials
Entscheidend für eine erfolgreiche RNA-Isolierung ist auch die Menge und Qualität des Ausgangsmaterials. Zuviel oder verunreinigtes Probenmaterial verringert die Ausbeute und Reinheit durch unvollständige Zelllyse oder Verklumpungen in der Säule. Verwenden Sie für optimale Ergebnisse mit unserem RNA Mini Kit bis zu 20 mg Gewebe, 5 x 106 Zellen oder bis zu 1 × 109 Bakterien. Achten Sie auch darauf, dass Ihre Proben vollständig lysiert und homogenisiert sind bevor Sie sie auf die Säulen bringen, um optimale Erträge zu erzielen.

3. Entfernung von DNA-Kontaminationen
Ein weiteres Problem bei der RNA-Aufreinigung stellen DNA-Kontaminationen dar, die die Reinheit der RNA mindern. Herkömmliche RNA-Isolierungsmethoden entfernen DNA durch einen zusätzlichen, langwierigen DNase-Verdau. Unser RNA Mini Kit entfernt DNA effektiv, durch integriertes Wegfiltern der DNA, und spart Ihnen Zeit für andere Experimente oder eine Tasse Kaffee.  

Produktinformationen

Kategorie:
RNA-Isolierungskits
Produkttyp:
RNA Mini Kit
Isolierungsmethode:
Säulchen-basiert

Anwendung

  • Für die Isolierung von Total-RNA aus Gewebeproben, Zellen, Bakterien und Biopsien

Long non-coding RNAs direct the SWI/SNF complex to cell type-specific enhancers

James A. Oo, Timothy Warwick, Katalin Pálfi, Frederike Lam, Francois McNicoll, Cristian Prieto-Garcia, Stefan Günther, Can Cao, Yinuo Zhou, Alexey A. Gavrilov, Sergey V. Razin, Alfredo Cabrera-Orefice, Ilka Wittig, Soni Savai Pullamsetti, Leo Kurian, Ralf Gilsbach, Marcel H. Schulz, Ivan Dikic, Michaela Müller-McNicoll, Ralf P. Brandes, Matthias S. Leisegang
Nature Communications ( 2025)1 6:131

Loss of multiple micro-RNAs uncovers multi-level restructuring of gene regulation in rodents

Felix Langschied, Matthias S. Leisegang, Stefan Günther, Fabian Hahner, Ralf P. Brandes, Ingo Ebersberger
BMC Genomics (2025) 26:800

The transaminase-ω-amidase pathway senses oxidative stress to control glutamine metabolism and α-ketoglutarate levels in endothelial cells

Niklas Herrle, Pedro F Malacarne, Timothy Warwick, Alfredo Cabrera-Orefice, Yiheng Chen, Maedeh Gheisari, Souradeep Chatterjee, Matthias S Leisegang, Tamim Sarakpi, Sarah Wionski, Melina Lopez, Carine Kader, Tom Teichmann, Maria-Kyriaki Drekolia, Ina Koch , Marcus Keßler, Sabine Klein, Frank Erhard Uschner, Jonel Trebicka, Steffen Brunst, Ewgenij Proschak, Stefan Günther, Mónica Rosas-Lemus, Nina Baumgarten, Stephan Klatt, Thimoteus Speer, Sofia-Iris Bibli, Marta Segarra, Amparo Acker-Palmer, Julian U G Wagner, Ilka Wittig, Stefanie Dimmeler, Marcel H Schulz, J B Richards, Ralf Gilsbach, Travis T Denton, Ingrid Fleming, Luciana Hannibal, Ra lf P Brandes,Flávia Rezende
The EMBO Journal 45:3 (2026) 820 - 855

RUNX1 interacts with lncRNA SMANTIS to regulate monocytic cell functions

Lisa M.Weiss, Timothy Warwick, Simonida Zehr, Stefan Günther, Sebastian Wolf, Tessa Schmachtel, Judit Izquierdo Ponce, Katalin Pálfi, Tom Teichmann, Alicia Schneider, Julia Stötzel, StefanKnapp, Andreas Weigert, Rajkumar Savai, Michael A. Rieger, Thomas Oellerich, Ilka Wittig, James A.Oo, Ralf P. Brande, Matthias S. Leisegang
Communications Biology (2024) 7:1131

Dynamic cell culture modulates colon cancer cell migration in a novel 3D cell culture system

M. Mohamadian Namaqi, F. Moll , S. Wiedemeier, A. Grodrian & K. Lemke
Scientific Reports (2024) 14:18851

NoxO1 Determines the Level of ROS Formation by the Nox1-Centered NADPH Oxidase

Dana Maureen Hebchen, Manuela Spaeth, Niklas Müller, Katrin Schröder
Antioxidants (2024) 13, 1113

HIF1α-AS1 is aDNA:DNA:RNA triplex-forming lncRNA interacting with the HUSH complex

Matthias S. Leisegang, Jasleen Kaur Bains, Sandra Seredinski, James A. Oo, Nina M. Krause, Chao-Chung Kuo, Stefan Günther, Nevcin Sentürk Cetin, Timothy Warwick, Can Cao, Frederike Boos, Judit Izquierdo Ponce, Shaza Haydar, Rebecca Bednarz, Chanil Valasarajan, Dominik C. Fuhrmann, Jens Preussner, Mario Looso, Soni S. Pullamsetti, Marcel H. Schulz, Hendrik R. A. Jonker, Christian Richter, Flávia Rezende, RalfGilsbach, Beatrice Pflüger-Müller, Ilka Wittig, Ingrid Grummt, Teodora Ribarska, Ivan G. Costa, Harald Schwalbe, Ralf P. Brandes
Nature Communications (2022) 13: 6563

Nuclear receptor activation shapes spatial genome organization essential for gene expression control: lessons learned from the vitamin D receptor

Timothy Warwick, Marcel H. Schulz, Ralf Gilsbach, Ralf P. Brandes, Sabine Seuter
Nucleic Acids Research (2022) 50:7

Reactive Oxygen Species Differentially Modulate the Metabolic and Transcriptomic Response of Endothelial Cells

Niklas Müller, Timothy Warwick, Kurt Noack, Pedro Felipe Malacarne, Arthur J. L. Cooper, Norbert Weissmann, Katrin Schröder, Ralf P. Brandes, Flávia Rezende
Antioxidants (2022) 11, 434

Cre-Recombinase Induces Apoptosis and Cell Death in Enterocyte Organoids

Franziska Moll, Manuela Spaeth, Katrin Schröder
Antioxidants (2022) 11, 1452

Concentration-Dependent Type 1 Interferon-Induced Regulation of MX1 and FABP3 in Bovine Endometrial Explants

Simone Tamara Schabmeyer, Anna Maria Kneidl, Julia Katharina Schneider, Sandra Kirsch, Yury Zablotski, Wolfram Petzl, Frank Weber, Holm Zerbe, Marie Margarete Meyerholz
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Mycobacterium smegmatis PafBC is involved in regulation of DNA damage response

Begonia Fudrini Olivencia, Andreas U. Müller, Bernd Roschitzki, Sibylle Burger, Eilika Weber-Ban, Frank Imkamp
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Activation of Rac-1 and RhoA Contributes to Podocyte Injury in Chronic Kidney Disease

Andrea Babelova, Felix Jansen, Kerstin Sander, Matthias Löhn, Liliana Schäfer, Christian Fork, Hartmut Ruetten, Oliver Plettenburg, Holger Stark, Christoph Daniel, Kerstin Amann, Hermann Pavenstädt, Oliver Jung, Ralf P. Brandes
PLoS ONE 8(11): e80328 (2013)